Katedra Farmakodynamiki – aparatura i metody

Aparatura badawcza

  • Zestaw do narządów izolowanych sprzężony z komputerem
  • Zestaw do izolowanego serca
  • Kompletna aparatura ELISA
  • Aparat do pomiaru ciśnienia tętniczego u małych zwierząt – DATAMAX, firmy Columbus sprzężony z komputerem
  • Aparat EKG dla małych zwierząt laboratoryjnych z komputerową możliwością analizy elektrokardiogramu
  • Aparat EKG przystosowany do zapisu elektrokardiogramu izolowanego serca szczura
  • Aparaty EKG: E-30, Multicard E – 30, AsCARD B5, EK 1 T – 03M2
  • Generator elektrowstrząsów GE – 01
  • Mikropompy dozujące
  • Aparat do badania aktywności p/bólowej związków metodą „hot plate”
  • Analgezymetr typu Ugo-Basile do badania aktywności p/bólowej związków
  • Zestaw aparatury do techniki PCR i RLT
  • Aparat ROTA ROT
  • Aparat do oznaczania aktywności przeciwbólowej i przeciwzapalnej u szczura metodą termiczną „ Plantar test”
  • Zestaw do pomiaru obrzęku łapy szczura i myszy wraz z programem komputerowym i zestawem statywów
  • Automatyczny system do pomiaru ciśnienia tętniczego u szczurów i myszy metodą bezkrwawą
  • Zestaw “Von Frey” wraz z oprogramowaniem.
  • Klatki z czujnikami do badania aktywności lokomotorycznej zwierząt (Ugo Basile)
  • Aparat do pomiaru ciśnienia metodą bezkrwawą
  • Pletyzmometr
  • Klatka dla myszy MICE PASIVE z oprogramowaniem
  • Labirynt wodny Morrisa
  • Labirynt uniesiony dla myszy, moduł SMART do oprogramowania, kamera 

Techniki badawcze

  • Oznaczenie aktywności przeciwhistaminowej, przeciwserotoninowej, alfa-adrenolitycznej, cholinolitycznej oraz spazmolitycznej nowych związków w testach in vitro na izolowanych narządach (aorta szczura, jelito cienkie świnki morskiej, jelito cienkie królika)
  • Oznaczenie aktywności przeciwbólowej i przeciwzapalnej w testach:
    • „gorącej płytki” (hot plate)
    • „przeciągania się” (writhing syndrome)
    • usunięcia ogona” (tail flick)
    • w modelu obrzęku karageninowego, kapsaicynowego (ból neuropatyczny), formalinowego (ból przewlekły)
    • znieczulenia miejscowego (królik, mysz, świnka morska)
    • w modelu zapalenia indukowanego zymosanemOznaczenie aktywności przeciwarytmicznej w testach in vivo
  • Oznaczenie aktywności przeciwarytmicznej w niemiarowości wywołanej okluzją i reperfuzją naczynia wieńcowego in vitro wg metody Lubbe
  • Oznaczenie wpływu na elektrokardiogram szczura w testach in vitroin vivo
  • Oznaczenie aktywności hipotensyjnej metodą krwawą i bezkrwawą
  • Oznaczenie działania przeciwdrgawkowego w testach chemicznych i elektrycznych.
  • Oznaczenie wpływu na OUN (ruchliwość, sen, neurotoksyczność w teście Rota Rot oraz w „teście komina”)
  • Oznaczenie działania przeciwlękowego.
  • Oznaczenie działania przeciwdepresyjnego (test Porsolta)
  • Oznaczenie cytotoksyczności oraz toksyczności ostrej przy różnych drogach podania.
  • Oznaczenie metodami spektrofotometrycznymi lub ELISA: białek, enzymów, profilu lipidowego i/lub węglowodanowego, aktywności antyoksydacyjnej, NO
  • Oznaczenie aktywności antagonistycznej w stosunku do jonów Ca2+
  • Oznaczenie toksyczności ostrej przy róznych drogach podania