Aparatura badawcza
- Zestaw do narządów izolowanych sprzężony z komputerem
- Zestaw do izolowanego serca
- Kompletna aparatura ELISA
- Aparat do pomiaru ciśnienia tętniczego u małych zwierząt – DATAMAX, firmy Columbus sprzężony z komputerem
- Aparat EKG dla małych zwierząt laboratoryjnych z komputerową możliwością analizy elektrokardiogramu
- Aparat EKG przystosowany do zapisu elektrokardiogramu izolowanego serca szczura
- Aparaty EKG: E-30, Multicard E – 30, AsCARD B5, EK 1 T – 03M2
- Generator elektrowstrząsów GE – 01
- Mikropompy dozujące
- Aparat do badania aktywności p/bólowej związków metodą „hot plate”
- Analgezymetr typu Ugo-Basile do badania aktywności p/bólowej związków
- Zestaw aparatury do techniki PCR i RLT
- Aparat ROTA ROT
- Aparat do oznaczania aktywności przeciwbólowej i przeciwzapalnej u szczura metodą termiczną „ Plantar test”
- Zestaw do pomiaru obrzęku łapy szczura i myszy wraz z programem komputerowym i zestawem statywów
- Automatyczny system do pomiaru ciśnienia tętniczego u szczurów i myszy metodą bezkrwawą
- Zestaw “Von Frey” wraz z oprogramowaniem.
- Klatki z czujnikami do badania aktywności lokomotorycznej zwierząt (Ugo Basile)
- Aparat do pomiaru ciśnienia metodą bezkrwawą
- Pletyzmometr
- Klatka dla myszy MICE PASIVE z oprogramowaniem
- Labirynt wodny Morrisa
- Labirynt uniesiony dla myszy, moduł SMART do oprogramowania, kamera
Techniki badawcze
- Oznaczenie aktywności przeciwhistaminowej, przeciwserotoninowej, alfa-adrenolitycznej, cholinolitycznej oraz spazmolitycznej nowych związków w testach in vitro na izolowanych narządach (aorta szczura, jelito cienkie świnki morskiej, jelito cienkie królika)
- Oznaczenie aktywności przeciwbólowej i przeciwzapalnej w testach:
- „gorącej płytki” (hot plate)
- „przeciągania się” (writhing syndrome)
- usunięcia ogona” (tail flick)
- w modelu obrzęku karageninowego, kapsaicynowego (ból neuropatyczny), formalinowego (ból przewlekły)
- znieczulenia miejscowego (królik, mysz, świnka morska)
- w modelu zapalenia indukowanego zymosanemOznaczenie aktywności przeciwarytmicznej w testach in vivo
- Oznaczenie aktywności przeciwarytmicznej w niemiarowości wywołanej okluzją i reperfuzją naczynia wieńcowego in vitro wg metody Lubbe
- Oznaczenie wpływu na elektrokardiogram szczura w testach in vitro i in vivo
- Oznaczenie aktywności hipotensyjnej metodą krwawą i bezkrwawą
- Oznaczenie działania przeciwdrgawkowego w testach chemicznych i elektrycznych.
- Oznaczenie wpływu na OUN (ruchliwość, sen, neurotoksyczność w teście Rota Rot oraz w „teście komina”)
- Oznaczenie działania przeciwlękowego.
- Oznaczenie działania przeciwdepresyjnego (test Porsolta)
- Oznaczenie cytotoksyczności oraz toksyczności ostrej przy różnych drogach podania.
- Oznaczenie metodami spektrofotometrycznymi lub ELISA: białek, enzymów, profilu lipidowego i/lub węglowodanowego, aktywności antyoksydacyjnej, NO
- Oznaczenie aktywności antagonistycznej w stosunku do jonów Ca2+
- Oznaczenie toksyczności ostrej przy róznych drogach podania